Sintlife

sostituto osseo malleabile

Sintlife-sostituto osseo malleabile

Nanostruttura biomimetica: la natura come modello

È stato dimostrato che la presenza di ioni Mg2+ deforma la struttura della cella cristallina di idrossiapatite rendendola instabile e biologicamente attiva, favorendo così la formazione ossea, il rimodellamento e un rapido riassorbimento cellulomediato del materiale.

Inoltre, la presenza di magnesio modifica le proprietà chimico-fisiche superficiali dell’idrossiapatite: il biomateriale interagisce attivamente con le molecole d’acqua* per catturare rapidamente le proteine chiave coinvolte nell’osteogenesi.

*Bertinetti et al. Langmuir (2009)


 

Un processo sincronizzato

SINTlife è un materiale unico ed innovativo in grado di interagire con le cellule che prendono parte al processo di generazione di nuovo tessuto osseo. Grazie al biomimetismo chimico e geometrico nanostrutturale ed alle proprietà di superficie, SINTlife viene rimodellato e riassorbito dall’azione cellulare in un tempo fisiologicamente adeguato (6-18 mesi).

Permane nel sito di applicazione per la durata necessaria alla crescita e alla maturazione del nuovo osso. Durante la fase di rimodellamento, si può osservare l’attività di riassorbimento ad opera degli osteoclasti intorno alle particelle di SINTlife, fino ad una completa rigenerazione ossea. SINTlife promuove una ricostruzione ossea fisiologica, rapida ed efficace.

*Landi et al., J. Mater Sci: Mater Med (2008)

SINTlife è indicato per varie procedure chirurgiche:

· mantenimento della cresta ossea

· rialzo del seno mascellare anche per via crestale

· difetti ossei parodontali.

· forcazioni (grado I e II)

 

SINTlife può essere miscelato con osso autologo, fluidi biologici, concentrato midollare e fattori di crescita.

SINTlife Spine è disponibile con i seguenti codici:

Putty

codice
descrizione
q.ta per confezione
PFS015056-04-00
Putty 2 siringhe da 0,5 cc/cad.
2x0,5 cc

Microgranuli

codice
descrizione
q.ta per confezione
PFS015055-00-00
Microgranuli 450-600 micron – 0,5 g
1
PFS015055-10-00
Microgranuli 600-900 micron – 0,5 g
1
PFS015155-00-00
Microgranuli 450-600 micron
2 monodosi da 0,5 g/cad
PFS015155-10-00
Microgranuli 600-900 micron
2 monodosi da 0,5 g/cad
  1. Barbanti Brodano, G., Mazzoni, E., Tognon, M., Griffoni, C. & Manfrini, M. Human mesenchymal stem cells and biomaterials interaction: a promising synergy to improve spine fusion. Eur Spine J 21 Suppl 1, S3–9 (2012).
  2. Bròdano, G. B. et al. Hydroxyapatite-Based Biomaterials vs. Autologous Bone Graft in Spinal Fusion: An in Vivo Animal Study. Spine (2014). doi:10.1097/BRS.0000000000000311
  3. Caneva, M. et al. Magnesium-enriched hydroxyapatite at immediate implants: a histomorphometric study in dogs. Clin Oral Implants Res 22, 512–517 (2011).
  4. Canullo, L., Bignozzi, I., Cocchetto, R., Cristalli, M. P. & Iannello, G. Immediate positioning of a definitive abutment versus repeated abutment replacements in post-extractive implants: 3-year follow-up of a randomised multicentre clinical trial. Eur J Oral Implantol 3, 285–296 (2010).
  5. Canullo, L., Heinemann, F., Gedrange, T., Biffar, R. & Kunert-Keil, C. Histological evaluation at different times after augmentation of extraction sites grafted with a magnesium-enriched hydroxyapatite: double-blinded randomized controlled trial. Clin Oral Implants Res 24, 398–406 (2013).
  6. Canullo, L. & Sisti, A. Early implant loading after vertical ridge augmentation (VRA) using e-PTFE titanium-reinforced membrane and nano-structured hydroxyapatite: 2-year prospective study. Eur J Oral Implantol 3, 59–69 (2010).
  7. Checchi, V., Savarino, L., Montevecchi, M., Felice, P. & Checchi, L. Clinical-radiographic and histological evaluation of two hydroxyapatites in human extraction sockets: a pilot study. Int J Oral Maxillofac Surg 40, 526–532 (2011).
  8. Crespi, R., Capparè, P., Addis, A. & Gherlone, E. Injectable magnesium-enriched hydroxyapatite putty in peri-implant defects: a histomorphometric analysis in pigs. Int J Oral Maxillofac Implants 27, 95–101 (2012).
  9. Crespi, R., Capparè, P. & Gherlone, E. Magnesium-enriched hydroxyapatite compared to calcium sulfate in the healing of human extraction sockets: radiographic and histomorphometric evaluation at 3 months. J. Periodontol. 80, 210–218 (2009).
  10. Crespi, R., Capparè, P. & Gherlone, E. Dental implants placed in extraction sites grafted with different bone substitutes: radiographic evaluation at 24 months. J. Periodontol. 80, 1616–1621 (2009).
  11. Crespi, R., Capparè, P. & Gherlone, E. Osteotome sinus floor elevation and simultaneous implant placement in grafted biomaterial sockets: 3 years of follow-up. J. Periodontol. 81, 344–349 (2010).

 

Bibliography sintlife
June 03rd 2014 2/2

  1. Crespi, R. et al. Magnesium-enriched hydroxyapatite versus autologous bone in maxillary sinus grafting: combining histomorphometry with osteoblast gene expression profiles ex vivo. J. Periodontol. 80, 586–593 (2009).
  2. Dallari, D. et al. A prospective, randomised, controlled trial using a Mg-hydroxyapatite - demineralized bone matrix nanocomposite in tibial osteotomy. Biomaterials 33, 72–79 (2012).
  3. Manfrini, M. et al. Mesenchymal stem cells from patients to assay bone graft substitutes. J. Cell. Physiol. 228, 1229–1237 (2013).
  4. Rebaudi, A., Maltono, A. A., Pretto, M. & Benedicenti, S. Sinus grafting with magnesium-enriched bioceramic granules and autogenous bone: a microcomputed tomographic evaluation of 11 patients. Int J Periodontics Restorative Dent 30, 53–61 (2010).
  5. Sisti, A. et al. Clinical evaluation of a ridge augmentation procedure for the severely resorbed alveolar socket: multicenter randomized controlled trial, preliminary results. Clin Oral Implants Res 23, 526–535 (2012)
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